ГЕТЕРОГЕННОСТЬ ПЛАЗМИД МОЛЕКУЛЯРНОЙ МАССОЙ 2,3 МДа В ШТАММАХ Salmonella enteritidis

Авторы: Раков А.В.¹, Шубин Ф.Н.², Кузнецова Н.А.³, Соловьева А.С.⁴

Реферат

Цель исследования – изучить плазмиды с молекулярной массой 2,3 МДа (3609 пар оснований), а также их распространение в штаммах Salmonella enteritidis, изолированных из различных экологических источников в разное время на территории Российской Федерации. Материал и методы. Выполнено ПЦР-типирование 33 штаммов S. enteritidis, выделенных за период с 1995 по 2017 г., содержащих описанную нами ранее в штаммах микроба плазмиду молекулярной массой 2,3 МДа. Результаты и их обсуждение. Данная плазмида была впервые секвенирована нами. Показано ее родство представленной в GenBank плазмиде из штамма S. typhimurium CFSAN001921, описанной в США. Установлено, что плазмида p2.3 в течение 23 лет присутствует в штаммах S. enteritidis, изолированных от больных и пищевых продуктов на административных территориях большинства субъектов РФ. Кроме того, показано, что плазмида p2.3 может быть гетерогенной по нуклеотидному составу. Заключение. Учитывая, что плазмида p2.3 выделена от больных в США, а исследованные нами штаммы – от больных и из продуктов животного происхождения в России, можно полагать, что ареал распространения данной плазмиды носит трансконтинентальный характер.

Тэги

Salmonella enteritidis, плазмида p2.3, плазмидный анализ, полимеразная цепная реакция

Список литературы

1. Голубева И.В., Килессо В.А., Киселева Б.С., Прямухина Н.С., Татаринова С.Д., Хоменко Н.А., Ющенко Г.В. Энтеробактерии. Руководство для врачей. М.: Медицина, 1985. 320 c.

2. Кузнецова Н.А., Шубин Ф.Н., Раков А.В., Тарасенко Т.Т., Воронок В.М. Возрастная структура сальмонеллеза, вызванного доминирующими плазмидоварами Salmonella enteritidis, в г. Владивостоке // Тихоокеан. мед. журн. 2006. (3). 80–82.

3. Раков А.В. Микробиолого-клинические параллели при сальмонеллезной инфекции: автореф. дис. … канд. мед. наук. Владивосток, 2003.

4. Раков А.В., Шубин Ф.Н., Кузнецова Н.А. Гетерогенность плазмид молекулярной массой 1,4 МДа в штаммах Salmonella enteritidis // Бюл. СО РАМН. 2013. 33. (2). 10–15.

5. Шубин Ф.Н., Ковальчук Н.И., Кузнецова Н.А., Ревина Г.В., Раков А.В., Белоголовкина Н.А., Нечухаева Е.М. Микробиологический мониторинг за Salmonella enteritidis в Приморском крае. Фенотипическая и плазмидная характеристика возбудителя // Эпидемиол. и инфекц. болезни. 2002. (1). 36–40.

6. Шубин Ф.Н., Раков А.В., Кузнецова Н.А. Микробиологический молекулярно-генетический мониторинг за возбудителями кишечных инфекций как составная часть эпидемиологического надзора // Бюл. СО РАМН. 2011. (4). 100–106.

7. Boyd E.F., Hartl D.L. Recent horizontal transmission of plasmids between natural populations of Escherichia coli and Salmonella enterica // J. Bacteriol. 1997. 179. (5). 1622–1627.

8. Boyd E.F., Hartl D.L. Salmonella virulence plasmid. Modular acquisition of the spv virulence region by an F-plasmid in Salmonella enterica subspecies I and insertion into the chromosome of subspecies II, IIIa, IV and VII isolates // Genetics. 1998. 149. (3). 1183–1190.

9. Chiu C.H., Ou J.T. Rapid identification of Salmonella serovars in feces by specific detection of virulence genes, invA and spvC, by an enrichment broth culture-multiplex PCR combination assay // J. Clin. Microbiol. 1996. 34. (10). 2619–2622.

10. Kado C.I., Liu S.T. Rapid procedure for detection and isolation of large and small plasmids // J. Bacteriol. 1981. 145. (3). 1365–1373.

11. Kotetishvili M., Stine O.C., Kreger A., Morris J.G.Jr., Sulakvelidze A. Multilocus sequence typing for characterization of clinical and environmental Salmonella strains // J. Clin. Microbiol. 2002. 40. (5). 1626–1635.

12. Landeras E., Mendoza M.C. Evaluation of PCR-based methods and ribotyping performed with a mixture of PstI and SphI to differentiate strains of Salmonella serotype Enteritidis // J. Med. Microbiol. 1998. 47. (5). 427–434.

13. Liebana E., Garcia-Migura L., Breslin M.F., Davies R.H., Woodward M.J. Diversity of strains of Salmonella enterica serotype enteritidis from English poultry farms assessed by multiple genetic fingerprinting // J. Clin. Microbiol. 2001. 39. (1). 154–161.

14. Ramisse V., Houssu P., Hernandez E., Denoeud F., Hilaire V., Lisanti O., Ramisse F., Cavallo J.D., Vergnaud G. Variable number of tandem repeats in Salmonella enterica subsp. enterica for typing purposes // J. Clin. Microbiol. 2004. 42. (12). 5722–5730.

15. Ridley A.M., Threlfall E.J., Rowe B. Genotypic characterization of Salmonella enteritidis phage types by plasmid analysis, ribotyping, and pulsed-field gel electrophoresis // J. Clin. Microbiol. 1998. 36. (8). 2314–2321.

16. Rivera M.J., Rivera A., Castillo J., Rubio M.C., Gomez-Lus R. Plasmid profile in epidemiological studies of human Salmonella infections // J. Chemother. 1993. 5. (Suppl. 1). 288–290.

17. Rychlik I., Karpiskova R., Faldynova M., Sisak F. Computer-assisted restriction endonuclease analysis of plasmid DNA in field strains of Salmonella enteritidis // Can. J. Microbiol. 1998. 44. (12). 1183–1185.

18. Sajid S.U., Schwarz S. Plasmid fingerprinting and virulence gene detection among indigenous strains of Salmonella enterica serovar enteritidis // J. Ayub. Med. Coll. Abbottabad. 2009. 21. (2). 83–86.

19. Soto S.M., Guerra B., González-Hevia M.A., Mendoza M.C.. Potential of three-way randomly amplified polymorphic DNA analysis as a typing method for twelve Salmonella serotypes // Appl. Environ. Microbiol. 1999. 65. (11). 4830–4836.

20. Spratt B.G., Maiden M.C.J. Bacterial population genetics, evolution and epidemiology // Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 1999. 354. (1384). 701–710.

21. Winokur P.L., Vonstein D.L., Hoffman L.J., Uhlenhopp E.K., Doern G.V. Evidence for transfer of CMY-2 AmpC beta-lactamase plasmids between Escherichia coli and Salmonella isolates from food animals and humans // Antimicrob. Agents Chemother. 2001. 45. (10). 2716–2722.

22. Winokur P.L. Molecular epidemiological techniques for Salmonella strain discrimination // Front. Biosci. 2003. (8). c14–c24.

Об авторах (для корреспонденции):

Раков А.В. – к.м.н., старший научный сотрудник, e-mail: alexeyrakov@mail.ru

Полный текст

snmzh_2-2019_rakov_40-45.pdf

Поступило: 24/04/2019

Принято к печати: 24/04/2019