Биологически активные вещества морских ежей – основа для разработки лекарственных препаратов и фармацевтических субстанций
Реферат
В обзоре изложены современные представления о биологической активности гонад морских ежей и метаболитов, выделенных из этих морских беспозвоночных животных. Показан их антиоксидантный, антигиперлипидемический, противовоспалительный, противоопухолевый и антибактериальный эффекты. Представлены материалы об оригинальных лекарственных препаратах, полученных учеными Дальнего Востока на основе хиноидных пигментов морских ежей. Обсуждаются перспективы получения новых лекарственных препаратов и БАД на основе метаболитов иглокожих, а также возможности расширения области применения гистохрома при других нозологических формах.
Тэги
1. Артюков А.А., Попов А.М., Цыбульский А.В. и др. Фармакологическая активность эхинохрома А отдельно и в составе БАД «Тимарин» // Биомед. химия. 2012. 58. (3). 281–290.
2. Беседнова Н.Н., Эпштейн Л.М. Природный модификатор функций врожденного иммунитета (ДНК из молок дальневосточных лососей). Владивосток: Медицина ДВ, 2010. 192 с.
3. Беседнова Н.Н., Запорожец Т.С., Макаренкова И.Д. и др. Сульфатированные полисахариды водорослей – модификаторы функций врожденного иммунитета при бактериальных, вирусных и паразитарных болезнях // Успехи соврем. биол. 2011. 131. (5). 503–517.
4. Беседнова Н.Н., Запорожец Т.С. Новые агонисты рецепторов врожденного иммунитета из морских гидробионтов // Журн. микробиол. эпидемиол. иммунобиол. 2011. (5). 98–106.
5. Варешин Н.А. Влияние электромагнитных полей и некоторых веществ на процессы раннего эмбриогенеза морских ежей: автореф. дис. … канд. биол. наук. Владивосток, 2008.
6. Гусева М.Р., Бесланеева М.Б. Клиническое обоснование эффективности применения антиоксидантного отечественного препарата «гистохром» // Вестн. офтальмол. 2010. (3). 37–39.
7. Даниленко А.О. Регуляция свободнорадикальных процессов и апоптоза при окислительном стрессе: автореф. дис. … канд. биол. наук. Ростов-на-Дону, 2012.
8. Дерягина В.П., Рыжова Н.И., Ильницкий А.П. и др. Действие природного антиоксиданта эхинохрома на рост подкожно перевитой аденокарциномы Эрлиха // Рос. онкол. журн. 2005. (3). 32–36.
9. Задорожный П.А. Влияние среды и состояния организма на содержание каротиноидов у морских ежей: автореф. дис. … канд. биол. наук. Владивосток, 2003.
10. Интернет-ресурс: http://www.tumorres.com/tumor-stem-cell/699.htm.
11. Козлов В.К., Козлов М.В., Лебедько О.А. и др. Клинико-экспериментальное обоснование применения эхинохрома А для коррекции и профилактики структурно-метаболических нарушений в системе органов дыхания на ранних этапах онтогенеза // Дальневосточн. мед. журн. 2009. (2). 58–61.
12. Козлов В.К., Козлов М.В., Гусева О.Е. и др. Антиоксидантная активность эхинохрома А при хронических воспалительных заболеваниях легких у детей // Тихоокеан. мед. журн. 2009. (3). 106–107.
13. Козлов В.К., Козлов М.В., Лебедько О.А. и др. Влияние эхинохрома А на некоторые параметры системного свободнорадикального статуса и Т-клеточного иммунитета у детей с хроническими воспалительными заболеваниями легких в стадии ремиссии // Дальневосточн. мед. журн. 2010. (1). 55–58.
14. Костецкий Э.Я., Веланский П.В., Санина Н.М. Фосфолипиды органов и тканей иглокожих и оболочников залива Петра Великого (Японское море) // Биология моря. 2012. 38. (1). 65–71.
15. Кривошапко О.А., Попов А.М. Лечебные и профилактические свойства липидов и антиоксидантов, выделенных из морских гидробионтов // Вопр. питания. 2011. (2). 4–8.
16. Крыжановский С.П., Яцкова М.А., Головачева В.Д. Гиполипидемическое действие БАД к пище из икры морских ежей в монотерапии и комбинации с аторвастатином // Тихоокеан. мед. журн. 2012. (1). 29–31.
17. Лебская Т.К., Шаповалова Л.А. Биохимические особенности баренцевоморского ежа Strongylocentrotus droebachiensis и аспекты его переработки. Мурманск, 2008. 146 с.
18. Мищенко Н.П., Федореев С.А., Догадова Л.П. Препарат гистохром для офтальмологии // Вестн. ДВО РАН. 2004. (3). 111–119.
19. Мищенко Н.П., Федореев С.А., Гусев Е.И. и др. Влияние гистохрома на динамику неврологических нарушений и МРТ-картины при экспериментальном геморрагическом инсульте // Журн. неврол. Инсульт. 2005. (15). 61–66.
20. Пат. 2134107 РФ. Препарат «гистохром» для лечения воспалительных заболеваний сетчатки и роговицы глаз / Г.Б. Еляков, О.Б. Максимов, Н.П. Мищенко и др.; опубл. 10.08.99.
21. Пат. 2340216 РФ. Биологически активная добавка к пище и способ ее получения / А.А. Артюков, В.П. Глазунов, Э.П. Козловская; опубл. 10.12.08.
22. Пат. 2366413 РФ. Способ реабилитации больных после косметических операций / В.И. Братко, В.В. Атаманов, А.В. Кулаков; опубл. 10.09.09.
23. Пат. 2375710 РФ. Способ определения экологического статуса территорий на содержание стронция / С.Ф. Тютиков, В.В. Ермаков; опубл. 25.09.08.
24. Пат. 2396244 РФ. Способ получения пурпурогаллина / А.А. Артюков, В.В. Маханьков, Е.В. Купера и др.; опубл. 10.08.10.
25. Попов А.М. Биологическая активность и механизмы действия вторичных метаболитов из наземных растений и морских беспозвоночных: автореф. дис. … докт. биол. наук. Владивосток, 2003.
26. Приезжева Е.Ю., Лебедько О.А., Рыжавский Б.Я., Козлов В.К. Влияние эхинохрома А на процессы свободнорадикального окисления в почках 40-суточных белых крыс, подвергнутых пренатальному воздействию нитрата свинца // Здоровье. Мед. экол. Наука. 2009. (4–5). 39–40.
27. Родькина С.А., Чэнь Б. Влияние температуры как фактора среды на состав липидов и жирных кислот в гонадах морского ежа Strongylocentrotus nudus // Изв. ТИНРО. 2007. (148). 289–296.
28. Соловьев А.Ю., Морозова П.Ю., Чернова И.А. и др. Выделение и активность регуляторных пептидов из икры морских ежей // Химико-фармацевтич. журн. 2010. (11). 14–17.
29. Стоник В.А. Изучение природных соединений в ТИБОХ ДВО РАН // Вестн. ДВО РАН. 2005. (4). 138–144.
30. Стоник В.А., Толстиков Г.А. Природные соединения и создание отечественных лекарственных препаратов // Вестн. ДВО РАН. 2008. 78. (8). 675–687.
31. Халфина Т.Н. Клинико-патогенетические аспекты висцеральных проявлений при подагре: автореф. дис. … канд. мед наук. Казань, 2012.
32. Явнов С.В. Атлас иглокожих и асцидий дальневосточных морей России. Владивосток, 2010.
33. Abubakar L., Mwangi C., Uku J., Ndirangu S. Antimicrobial activity of various extracts of the sea urchin Tripneustes gratilla // Afr. J. Pharmacol. Ther. 2012. 1. (1). 19–23.
34. Bandaranayake W.W. The nature and role pigments of marine invertebrates // Nat. Prod. Rep. 2006. 23. 223–255.
35. Chairman K., Aja R.S., Alagomuthu G. Cytotoxic and antioxidant activity of selected marine sponges // Asian Pac. J. Trop. Dis. 2012. 28. 234–238.
36. Cinelli L.P., Vilela E.S., Mourao A.S. Seminal fluid from sea urchin (Lytechinus variegatus) contains complex sulfated polysaccharides linked to protein // Comp. Biochem. Physiol. 2009. 5. 258–265.
37. Cumashi A., Ushakova N.A., Peobrazhenskaya M.E. et al. A comparative study of the anti-inflammatory, anticoagulant, antiangiogenic and antiadhesive activities of nine different fucoidans from brown seaweeds // Glicobiology. 2007. 17. (5). 541–552.
38. Garama D., Bremer P., Carne A. Extraction and analysis of carotenoids from the New Zealand sea urchin Evechinus chloroticus gonads // Acta Biochim. Pol. 2012. 59. (1). 83–85.
39. Gavin N.M., Durako M.J. Localization and antioxidant capacity of flavonoids in Halophila jonsonii in response to experimental light and salinity variation // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2012. 416. (417). 32–40.
40. Haug T., Kjuul A.K., Styrvold O.B. et al. Antibacterial activity in Strongylocentrotus droebachiensis (Echinoidea), Cucumaria frondosa (Holothuroidea) and Asterias rubens (Asteroidea) // J. Invert. Pathol. 2002. 81. 94–102.
41. Ji J., Wang L., Wu H., Luan H.M. Bio-function summary of marine oiligosaccharides // Int. J. Biol. Sci. 2011. 3 (1). 58–65.
42. Kalogeropoulos N., Mikellidi A., Nomicos T., Chiou A. Screening of macro- and bioactive microconstituents of commercial finfish and sea urchin eggs // LWT Food Sci. Technol. 2012. 46. (2). 525–531.
43. Kuwahara R., Hatate H., Tamami Y. et al. Antioxidant property of polyhidroxilated naphthoquinone pigments from shells of purple sea urchin Anthocidaris crassispina // LWT Food Sci. Technol. 2009. 42. (7). 1296–13000.
44. Le Bouffant R., Cormier P., Cueff A. et al. Sea urchin embrio as a model for analysis of the signaling pathways linking DNA damage checkpoint, DNA repair and apoptosis // Cell Mol. Life Sci. 2007. 64. (13). 1723–1734.
45. Liu C., Lin Q., Gao Y. et al. Characterization and antitumor activity of a polysaccharide from Strongylocentrotus nudus egg // Carbohgydr. Polym. 2007. 67. (3). 313–318.
46. Mamelona J., Saint-Louis R., Pelletier E. Proximate composition and nutritional profile of byproducts from green urchin and Atlantic sea cucumber processing plants // Int. J. Food Sci. Technol. 2010. 45. 2119–2126.
47. Mamelona J., Pelletier E., Girard-Lalancette I. et al. Antioxidants in digestive tracts and gonads of green urchin (Strongylocentrotus droebachiensis) // J. Food Compost. Anal. 2011. 24. (2). 179–183.
48. Matsuno T., Tsushima M. Carotenoids in sea urchins. Amsterdam, 2001.
49. Matsuno T. Aquatic animal carotenoids // Fish. Sci. 2001. 67. (5). 771–783.
50. Montano-Castaneda M.C., Santafe-Patino G.G. Evaluation of antioxidant activity of marine sponges // Actu. Biol. 2011. 33. (95). 173–181.
51. Mueller M., Lucas B., Novak J. et al. Oregano: a source for peroxisome proliferator-activated receptor gamma antagonists // J. Agric. Food. Chem. 2008. 56. (24). 11621–11630.
52. Newman D.J., Cragg G.M. Natural products as sources of new drugs over the last 25 years // J. Nat. Prod. 2007. 70. (3). 461–477.
53. Pomin V.H., Mourao P.A. Structure, biology, evolution and medical importance of sulfated fucans and galactans // Glycobiology. 2008. 18. 1016–1027.
54. Pomin V.H. An overview about the structure-function relationship of marine sulfated homopolysaccharides with regular chemical structures // Biopolymers. 2009. 91. 601–609.
55. Pomin V.H. Structural and functional insights into sulfated galactans: a systematic review // Glycoconjugate J. 2010. 27. 1–12.
56. Pomin V.H. Fucanomics and galactanomics: marine distribution, medicinal impact, conceptions and challenges // Mar. Drugs. 2012. 10. 793–811.
57. Pomin V.H., Mourao P.A.S. Structure versus anticoagulant and antithrombotic action of marine sulfated polysaccharides // Rev. Braz. Farmacogn. 2012. 22. (4). 248–256.
58. Qian Z.J., Jung W.K., Kang K.H. et al. In vitro antioxidant activities Pavlowa lutheri (Haptophyta) with the yeast Hansenula polymorpha // J. Phychol. 2012. 48. (2). 475–482.
59. Quin L., Zhu B.W., Zhou D.Y. et al. Preparation and antioxidant activity of enzymatic hydrolysates from purple sea urchin (Strongylocentrotus nudus) gonad // LWT Food Sci. Technol. 2011. 44. (4). 1113–1118.
60. Riccioni G. Marine carotenoids and oxidative stress // Mar. Drugs. 2012. 10. 116–118.
61. Rodriguez-Bernaldo D.Q.A., Lopez-Hernandes J., Simal-Lozano J. Separation of phospholipid classes in sea urchin Paracentrotus lividus by high-perfomance liquid chromatography // J. Chromatogr. B. Analyt. Technol. Biomed. Life Sci. 2002. 770. (1–2). 71–75.
62. Shamsuddin A.A., Lukman H., Kumari M.D., Noraznavaty I. Antibacterial activity of three species of sea urchin extracts from Pulau Bidong, Terengganu // J. Sustain. Sci. Manag. 2010. 5. (1). 116–124.
63. Shankarlal S., Prabu K., Natarajan E. Antimicrobial and antioxidant activity of purple sea urchin shell // Am.-Euras. J. Sci. Res. 2011. 6. (3). 178–181.
64. Sheean P., Hodges L.D., Kalafatis N. et al. Bioactivity of extracts from gonadal tissue of the edible Australia purple sea urchin Heliocidaris erythrogramma // J. Sci. Food Agric. 2007. 87. (4). 694–701.
65. Shillaci D., Arizza V., Parrinello N. et al. Antimicrobial and antistaphylococcal biofilm activity from the sea urchin Paracentrotus lividus // J. Appl. Microbiol. 2009. 108. 17–24.
66. Maoka T. Carotenoids in marine animals // Mar. Drugs. 2011. 9. (2). 278–293.
67. Uma B., Parvathavarthini R. Antibacterial effect of hexane extract of sea urchin Temnopleurus alexandri (Bell, 1884) // Int. J. Pharm. Tech. Res. 2010. 2 (3). 1677–1680.
68. Wilson-Sanders S. Invertebrate models for biomedical research, testing and education // 2011. 58. (2). 126–152.
69. Yang R., Wang J., Liu Z. et al. Antioxidant effect of a marine oligopeptide preparation from Chum Salmon (Oncorhynchus keta) by enzymatic hydrolysis in radiation injured mice // Mar. Drugs. 2011. 9. (11). 2304–2315.
70. Zhou D., Qin L., Zhu B. et al. Optimization of hydrolysis of purple sea urchin gonad by response surface methodology and evaluation of in vitro antioxidant activity of the hydrolysate // J. Sci. Food Agric. 2012. 92. (8). 1694–1701.
Крыжановский С.П. – к.м.н., главный врач
