Гормонально-биохимические особенности аллоксановой и стрептозотоциновой моделей экспериментального диабета

После введения крысам-самцам Вистар диабетогенной дозы аллоксана (170 мг/кг массы тела) у 31 % животных выявлен диабетико-уремический синдром с гибелью в течение первых пяти суток после введения препарата; 45 % животных проявили высокую и 34 % - низкую чувствительность к диабетогенному действию аллоксана. После введения крысам диабетогенной дозы стрептозотоцина (50 мг/кг массы тела) гибели животных отмечено не было; 55 % животных проявили высокую и 45 % - низкую чувствительность к диабетогенному действию препарата. Высокочувствительные к действию аллоксана или стрептозотоцина крысы, не смотря на разные механизмы повреждения островкового аппарата поджелудочной железы, однотипны по выраженности изменений гормонально-биохимических показателей через 14-21 сутки после введения препаратов и могут эффективно использоваться для изучения последствий гипоинсулинемии и коррекции гипергликемии различными соединениями.

1. Баранов В.Г., Соколоверова И.М., Гаспарян Э.Г. и др. Экспериментальный сахарный диабет. Роль в клинической диабетологии. Л.: Наука, 1983. 240 с.
2. Древаль А.В., Садыкова Р.Е., Мазо В.К. Влияние несбалансированности пищевого рациона на индуцирование и течение аллоксанового сахарного диабета у крыс // Пробл. эндокринол. 1991. 37. (6). 56-58.
3. Закирьянов А.Р., Плахотний М.А., Онищенко Н.А. и др. Диабетические осложнения у крыс при длительных сроках моделирования сахарного диабета 1-го типа // Патол. физиол. эксперим. терапии. 2007. (4). 21-25.
4. Кендыш И.Н. Регуляция углеводного обмена. М.: Медицина, 1985. 272 с.
5. Обухова Л.А., Дружинина Ю.Г., Пальчикова Н.А. и др. Влияние длительного приема пробиотика на морфофункциональное состояние эндокринной части поджелудочной железы у экспериментальных животных с аллоксановым диабетом // Бюл. СО РАМН. 2006. (2). 171-175.
6. Пальчикова Н.А., Кузьминова О.И., Селятицкая В.Г. Влияние перфторана на чувствительность животных к диабетогенному действию аллоксана и течение экспериментального диабета // Там же. 2006. (3). 113-116.
7. Пальчикова Н.А., Лутов Ю.В., Обухова Л.А., Селятицкая В.Г. Особенности течения экспериментального сахарного диабета при введении в рацион животных природного инсулинового комплекса // Там же. 2007. (2). 114-118.
8. Пальчикова Н.А., Селятицкая В.Г, Шорин Ю.П. Количественная оценка чувствительности экспериментальных животных к диабетогенному действию аллоксана // Пробл. эндокринол. 1987. 33. (4). 65-68.
9. Селятицкая В.Г., Пальчикова Н.А., Кузнецова Н.В. и др. Активность адренокортикальной системы у крыс с высокой и низкой устойчивостью к диабетогенному действию аллоксана // Фундаментальные исследования. 2011. (3). 142-148.
10. Смирнов Л.Д., Инчина В.И., Костин Я.В. и др. Возможности фармакологической коррекции метаболических нарушений при экспериментальном диабете препаратами антиоксидантного типа действия // Биомед. химия. 2004. 50. (3). 502-508.
11. Baydas B., Karagoz S., Meral I. Effects of oral zinc and magnesium supplementation on serum thyroid hormone and lipid levels in experimentally induced diabetic rats // Biol. Trace Elem. Res. 2002. 88. (3). 247-253.
12. Behr G.A., da Silvaa E.G., Romanelli A. et al. Pancreas b-cells morphology, liver antioxidant enzymes and liver oxidative parameters in alloxan-resistant and alloxan-susceptible Wistar rats: a viable model system for the study of concepts into reactive oxygen species // Fundam. Clin. Pharmacol. 2008. 22. 657-666.
13. Briede J., Stivrina M., Stoldere Dz. et al. Effect of cerebrocrast, a new long-acting compound on blood glucose and insulin levels in rats when administered before and after STZ-induced diabetes mellitus // Cell Biochem. Funct. 2007. 25. (6). 673-680.
14. Chatzigeorgiou A., Halapas A., Kalafatakis K., Kamper E. The use of animal models in the study of diabetes mellitus // In Vivo. 2009. 23. (2). 245-258.
15. Celik S., Erdogan S., Tuzcu M. Caffeic acid phenethyl ester (CAPE) exhibits significant potential as an antidiabetic and liver-protective agent in streptozotocin-induced diabetic rats // Pharmacol. Res. 2009. 60. (4). 270-276.
16. Chan O., Inouye K., Vranic M. et al. Hype­ractivation of the hypothalamo-pituitary-adrenocortical axis in streptozotocin-diabetes is associated with reduced stress responsiveness and decreased pituitary and adrenal sensitivity // Endocrinology. 2002. 143. (5). 1761-1768.
17. Elsner M., Tiedge M., Guldbakke B. et al. Importance of the GLUT2 glucose transporter for pancreatic beta cell toxicity of alloxan // Diabetologia. 2002. 45. (11). 1542-1549.
18. Evan A.P., Mong S.A., Connors B.A. et al. The effect of alloxan, and alloxan-induced diabetes on the kidney // Anat. Rec. 1984. 208. (1). 33-47.
19. Evan A.P., Mong S.A., Connors B.A. et al. The effect of streptozotocin and streptozotocin-induced diabetes on the kidney // Ren. Physiol. 1984. 7. (2). 78-89.
20. Lenzen S. The mechanisms of alloxan- and streptozotocin-induced diabetes // Diabetologia. 2008. 51. 216 - 226.
21. Mathews C.E., Leite E.H. Constitutive diffe_rences in antioxidant defense status distinguish alloxan-resistant and alloxan-susceptible mice // Free Radic. Biol. Med. 1999. 27. (3-4). 449-455.
22. Schein P.S., Loftus S. Streptozotocin: Depressi­on of mouse liver pyridine nucleotides // Cancer Res. 1968. 28. 1501-1506.
23. Selyatitskaya V.G., Cherkasova O.P., Pankina T.V., Palchikova N.A. Functional state of adrenocortical system in rats with manifest alloxan-induced diabetes mellitus // Bull. Exp. Biol. Med. 2008. 146. (6). 708-710.
24. Selyatitskaya V.G., Palchikova N.A., Kuznetsova N.V. Adrenocortical system activity in alloxan-resistant and alloxan-susceptible Wistar rats // J. Diabetes Mellit. 2012. 2. (2). 165-169.
25. Shkurupiy V.A, Palchikova N.A., Selyatitskaya V.G. et al. Silica inflammation modulate lipoperoxide and thiobarbituric acid reactive sybstances levels in liver and glucose concentration in blood of alloxan diabetic rats // Mod. Res. Inflamm. 2012. 1. (2). 19-25.
26. Szkudelski T., Kandulska K., Okulicz M. Alloxan in vivo does not only exert deleterious effects on pancreatic B cells // Physiol. Res. 1998. 47. (5). 343-346.
27. Szkudelski T. The Mechanism of alloxan and streptozotocin action in B cells of the rat pancreas // Ibed. 2001. 50. (6). 536-546.
28. Tanaka K., Nanbara S., Tanaka T. et al. Aminotransferase activity in the liver of diabetic mice // Diabetes Res. Clin. Pract. 1988. 5. (1). 71-75.
29. Tavangar K., Murata Y., Pedersen M.E. et al. Regulation of lipoprotein lipase in the diabetic rat // J. Clin. Invest. 1992. 90. (5). 1672-1678.
 

Пальчикова Н.А. - д.б.н., ведущий научный сотрудник, е-mail: labend@mail.ru
Кузнецова Н.В. - научный сотрудник, е-mail: labend@soramn.ru
Кузьминова О.И. - к.м.н., старший научный сотрудник, е-mail: labend@soramn.ru
Селятицкая В.Г. - д.б.н., проф., зав. лабораторией, е-mail: ccem@soramn.ru