1. Громыхина Н.Ю., Маркова Е.В., Любимов Г.Ю. и др. Продукция интерлейкина-1 и простагландина Е2 макрофагами мышей в условиях индукции Р-448-зависимой монооксигеназной активности // Иммунология. 1992. (1). 37–40.
2. Душкин М.И. Макрофаг. Многоликий и вездесущий // Наука из первых рук. 2012. (5). 26–33.
3. Любимов Г.Ю., Зенков Н.К., Вольский Н.Н., Козлов В.А. Хемилюминесценция перитонеальных макрофагов при действии макрофаг-активирующего фактора // Иммунология. 1992. (1). 40–43.
4. Маянский А.Н., Маянский Д.Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге // Новосибирск: Наука, 1989. 344 с.
5. Мирошниченко С.М., Коваленко Г.А., Цирельников Н.И., Панин Л.Е. Сравнительный анализ морфофункциональных показателей перитонеальных макрофагов мышей онкологической линии A/SN и белых беспородных // Вопр. онкологии. 2013. 59. (6). 771–776.
6. Оноприенко Л.В. Молекулярные механизмы регуляции активности макрофагов (обзорная статья) // Биоорган. химия. 2011. 37. (4). 437–451.
7. Фрейдлин И.С. Система мононуклеарных фагоцитов. М.: Медицина, 1984. 272 с.
8. Avau A., Matthys P. Therapeutic potential of interferon-gamma and its antagonists in autoinflammation: Lessons from murine models of systemic juvenile idiopathic arthritis and macrophage activation syndrome // Pharmaceuticals. 2015. 8. (4). 793–815.
9. Boshuizen M.C., de Winther M.P. Interferons as essential modulators of atherosclerosis // Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2015. 35. (7). 1579–1588.
10. Brand C., da Costa T.P., Bernardes E.S. et al. Differential development of oil granulomas induced by pristane injection in galectin-3 deficient mice // BMC Immunol. 2015. 16. 68.
11. Fukazawa Y., Kagaya K., Miura H. et al. Biological and biochemical characterization of macrophage activating factor (MAF) in murine lymphocytes: physiocochemical similarity of MAF to gamma interferon (IFN-gamma) // Microbiol. Immunol. 1984. 28. (6). 691–702.
12. Higginbotham J.N., Lin T.L., Pruett S.B. Effect of macrophage activation on killing of Listeria monocytogenes. Roles of reactive oxygen or nitrogen intermediates, rate of phagocytosis, and retention of bacteria in endosomes // Clin. Exp. Immunol. 1992. 88. (3). 492–498.
13. Marcato L.G., Ferlini A.P., Bonfim R.C. et al. The role of Toll-like receptors 2 and 4 on reactive oxygen species and nitric oxide production by macrophage cells stimulated with root canal pathogens // Oral Microbiol. Immunol. 2008. 23. (5). 353–359.
14. Mills C. M1 and M2 macrophages: Oracles of health and disease // Crit. Rev. Immunol. 2012. 32. (6). 463–488.
15. Olivo Rdo A., Teixeira Cde F., Silveira P.F. Representative aminopeptidases and prolyl endopeptidase from murine macrophages: comparative activity levels in resident and elicited cells // Biochem. Pharmacol. 2005. 69. (10). 1441–1450.
16. Rollag H., Degre M., Sonnenfeld G. Effects of interferon-alpha/beta and interferon-gamma preparations on phagocytosis by mouse peritoneal macrophages // Scand. J. Immunol. 1984. 20. (2). 149–155.
17. Schneider M. Collecting resident or thioglycollate-elicited peritoneal macrophages // Methods Mol. Biol. 2013. 1031. 37–40.
18. Turchyn L.R., Baginski T.J., Renkiewicz R.R. et al. Phenotypic and functional analysis of murine resident and induced peritoneal macrophages // Comp. Med. 2007. 57. (6). 574–580.
19. Weber K., Schilling J.D. Distinct lysosome phenotypes influence inflammatory function in peritoneal and bone marrow-derived macrophages // Int. J. Inflam. 2014. 2014. 154936.
